TA克隆實驗原理　

    TA克隆實驗原理
    TA克隆是利用耐熱聚合酶，如Taq聚合酶、Tfl、Tth等具有末端轉移酶活性，而不具有3 一5外切酶的校準活性，即在PCR產物的兩個3 末端加上未配對的單一A凸出尾 ，質粒載體提供線性3末端單一的T凸出尾，使該載體能夠直接與PCR產物連接。TA克隆技術比其它PCR克隆方法有更高的重組效率。
    TA克隆只需4個步驟：①擴增目的PCR產物；②制備T克隆載體；③PCR產物直接克隆至T載體上④轉化并篩選重組子。
    TA克隆實驗步驟
    （1）擴增后的PCR產物與T載體的連接
    取1只無菌Ep管、用微量進樣器按下列順序加入各成分。
    10×T4 DNA Ligase Buffer 2.5 ul
    PCR產物約0.3 pmol
    T載體約0.03pmol
    T4 DNA Ligase 1ul
    ddH2O 加至 25ul
    *1 DNA的摩爾數應控制在載體DNA摩爾數的3－10倍。
    *2 相同末端的載體與DNA進行連接時，應首先將載體進行去磷酸化處理，以防止其自身環(huán)化。
    （2）蓋好蓋子，用手指輕彈Ep管數次，并于臺式離心機離心2s 以集中溶液。
    （3）將反應管放入4℃金屬浴中反應20h。
    （4）取出約2ul的DNA連接液進行瓊脂糖凝膠電泳，鑒定連接結果，與未經連接的質粒DNA和酶切DNA一同作電泳。
    （5）用0.1×TE將連接混合物稀釋至50ul，使用10ul轉化大腸桿菌感受態(tài)細胞。
    （6）通過Amp抗性來篩選轉化子，轉化子擴增后，可將轉化的質粒提取出，進行電泳、酶切等進一步鑒定。